Асептика і антисептика


Асептика – комплекс заходів , спрямованих на попередження попадання збудників інфекції в рану або організм людини ( К. Гостіщев , 2001) .

Антисептика – комплекс заходів , спрямованих на боротьбу з інфекцією в організмі людини , а також на попередження або ліквідацію інфекційного запального процесу ( К. Гостіщев , 2000).

Джерело інфекції – це місця проживання, розвитку і розмноження мікроорганізмів. По відношенню до організму пацієнта виділяють екзогенні ( поза організмом ) і ендогенні ( всередині організму ) джерела інфекції.

Джерелом екзогенної інфекції є хворі з інфекційно – запальними захворюваннями , бацилоносії і тварини .

Основні шляхи передачі екзогенної інфекції: повітряно – краплинний; контактний ; імплантаційний .

Мікроорганізми проникають в рану із зовнішнього середовища різними шляхами:

• повітряним – з навколишнього повітря , в якому знаходяться мікроорганізми ;

• контактним – при зіткненні з раною інфікованих предметів : інструментів , перев’язувального матеріалу , операційної білизни , а також проникнення епідермальній флори пацієнта , при неправильній підготовці шкірних покривів операційного поля перед операцією ;

• імплантаційним – інфікування при залишенні в рані на тривалий час або постійно тих чи інших предметів , інфікованих при виконанні операції або внаслідок порушення правил стерилізації та зберігання ( шовного матеріалу , синтетичних протезів , кісткових фіксаторів ) .

Для попередження контактного інфікування необхідно , щоб усе, що стикається з раною , було стерильним ( операційний білизна , перев’язувальний та шовний матеріал , рукавички , інструменти , імплантаційні засоби). Це досягається спеціальною обробкою всього вищепереліченого , а також рук хірурга та операційного поля.

Джерелом ендогенної інфекції є гострі і хронічні запальні процеси в організмі (інфекційно -запальні захворювання шкіри і підшкірної клітковини , карієс , хронічний тонзиліт , гострий апендицит , гострий холецистит , а також мікрофлора ротової порожнини , кишечника , дихальних і сечовидільних шляхів) .

Основні шляхи передачі ендогенної інфекції: контактний , гематогенний , лімфогенний .

Контактна інфікування рани можливо при попаданні в неї інфікованого ексудату , гною , кишкового вмісту при порушенні техніки хірургічної маніпуляції. З вогнища інфекції , розташованого поза зоною оперативними-

ного посібника , мікроорганізми можуть бути занесені з потоком крові ( гематогенний шлях інфікування ) або лімфи ( лімфогенний шлях інфікування) .

Методами асептики ведеться боротьба з екзогенної інфекцією , а методами антисептики – з ендогенної інфекцією , у тому числі проникла із зовнішнього середовища (наприклад , при випадкових пораненнях ) .

Деконтамінація – це процес видалення або знищення мікроорганізмів з метою знешкодження та захисту , що включає в себе очищення , дезінфекцію та стерилізацію.

Очищення – процес , в результаті якого сторонні тіла (органічні матеріали , мікроорганізми і т.д. ) видаляються з поверхні об’єкта механічним ( ручна очистка) , фізичним ( ультразвукове очищення ) і хімічним (очищення детергентами , миючими порошками ) способами.

Дезінфекції – процес , що зменшує кількість патогенних мікроорганізмів (крім бактеріальних спор ) знаходяться на живому організмі , шкірі , медичній апаратурі , перев’язному матеріалі , хірургічних інструментах і т.д. Дезінфекція високого рівня проводиться для знищення мікобактерій туберкульозу , вегетативних форм бактерій , грибів і більшості вірусів ( включаючи віруси гепатиту і імунодефіциту людини ) . Застосовується для предметів , що контактують зі слизовими оболонками людини ( фиброгастроскопа , бронхоскопи , фіброколоноскопом і т.д.). В якості дезінфікуючих засобів використовують:

• механічні ( фільтрація води , повітря , механічне миття предметів із застосуванням деззасобів ) ;

• фізичні (висока температура , кип’ятіння , сухе гаряче повітря, водяна насичена пара , ультрафіолетове випромінювання ) ;

• хімічні (застосування спеціальних дезінфікуючих засобів ) . Стерилізація – процес знищення всіх відомих мікроорганізмів ,

включаючи бактеріальні спори . Види стерилізації :

• фізична ( сухе гаряче повітря , пар , радіація , ультразвук) ;

• хімічна ( газовий і рідинний ) .

Якщо є можливість використовувати фізичну стерилізацію або одноразове обладнання , хімічна стерилізація не застосовується.

АНТИСЕПТИЧНІ І ДЕЗІНФІКУЮЧІ ЗАСОБИ

Збудники захворювань (бактерії , віруси , патогенні гриби , найпростіші тощо ) завжди були і залишаються об’єктами найпильнішої уваги медичних працівників як одна з основних причин захворювань сучасної людини , порушення його здоров’я , працездатності , економічних витрат окремого індивідуума і всього суспільства в цілому.

Засоби, що діють на збудників захворювань , поділяються на 3 великі групи: хіміотерапевтичні , антисептичні та дезінфікуючі .

Хіміотерапевтичні засоби використовуються для впливу на збудників захворювань, що у організмі людини або тварин , тобто в ендосоматіческіх біотопах . До цієї групи відносяться протимікробні (антибіотики , сульфаніламіди та ін ) , противірусні , противомікозні , протипаразитарні та протівобластомние кошти.

Антисептичні ( anti – проти , sepsis – гниття) засоби використовуються для впливу на збудників захворювань, що у епісоматіческіх біотопах , тобто на поверхневих покривах ( шкірі , слизових , в стоматологічній практиці – на слизовій оболонці порожнини рота , тканинах зуба і парадонта ) , для промивання ран і порожнин. Необхідно відзначити , що деякі лікарські засоби, що використовуються per os , що створюють високі концентрації в кишечнику або сечовивідних шляхах і використовувані саме для впливу на збудників захворювань з вказаною локалізацією , в даний час також відносять до антисептиків ( « кишкові антисептики » , « уроантісептікі »). Більше того , такі класичні хіміотерапевтичні засоби , як антибіотики , противомікозні та ін при їх місцевому застосуванні ( у вигляді розчинів , мазей , кремів ) також розглядаються як антисептики.

Дезінфікуючі ( de – усунення , infectio – зараження) – це засоби, що використовуються поза організмом : для обробки виділень хворих , предметів догляду за хворими , інструментів і т.д. Якщо хіміотерапевтичні та антисептичні засоби є засобами індивідуальної терапії , то дезінфектанти використовуються як для профілактики захворювання окремого пацієнта , так і для профілактики поширення інфекції на рівні популяції.

Слід мати на увазі , що ряд лікарських речовин ( хлорамін , хлоргексидин , формальдегід та ін ) використовується і як дезінфектанти , і як антисептики (нерідко в різних концентраціях і різних лікарських формах). Це речовини так званого подвійного ( бінарного ) призначення.

Вимоги до дезінфікуючих засобів

• Повинні володіти широким спектром дії.

• Мати мікробоцідний ефект .

• Добре розчинятися у воді або утворювати з нею або повітрям стійкі активні суспензії , емульсії , аерозолі , тумани .

• Зберігати активність у знезаражується середовищі .

• Чи не пошкоджувати знезаражуються об’єкти.

• Володіти низькою токсичністю і аллергогенни .

Вимоги до антисептичним засобам

• Бажано мати засоби широкого спектру дії (для обробки рук хірурга , операційного поля) і вузького спектру дії для терапевтичної антисептики (після встановлення виду збудника і його чутливості) .

• Часто достатньо мікробостатіческого дії , так як слідом за припиненням зростання збудників вступають в дію чинники імунної системи. Але необхідні і мікробоцідние засобу (для обробки рук хірурга , операційного поля , а також для застосування у хворих з імунодефіцитом ) .

• В ідеалі препарати повинні добре розчинятися в ліпідах і погано у воді.

• Хороша розчинність в ліпідах сприяє накопиченню антисептика в місці нанесення , а хороша розчинність у воді ускладнює створення противомикробной концентрації на достатній час .

• Вихідна форма антисептика , по можливості , повинна мати форму порошку ( зручність зберігання , точність дозування , можливість приготування будь-яких лікарських форм).

• Чи не повинні забарвлювати шкіру пацієнта , бруднити білизну, одяг , мати неприємний запах ; бути стійкими до світла, температури , зберігати активність у присутності біоорганічних субстратів , при стерилізації і зберіганні. Препарати, що використовуються в стоматологічній практиці , повинні мати відповідні органолептичні властивості .

• Чи не мати токсичністю і аллергогенни .

КЛІНІЧНА ФАРМАКОЛОГІЯ ОСНОВНИХ дезінфектантів та антисептиків

Галогеносодержащіе препарати

Хлорамін Б – порошок , розчинний у воді , містить до 29 % активного хлору. Препарат широкого спектру дії ( ШСД ) , проте в останні роки до нього реєструються стійкі штами деяких мікроорганізмів. В основному використовується для дезінфекції предметів догляду і виділень , хворих при кишкових і повітряно – крапельних інфекціях в 1-2-3 % розчинах , при туберкульозі – у 5 % розчині. Як антисептик використовується рідко (у зв’язку з подразнюють ) : для промивання ран – в 2% , а для обробки рук – в 0,25-0,5 % розчинах .

Пантоцид – білий порошок, що містить близько 50 % активного хлору. Випускається в таблетках для знезараження води в похідних умовах (2 таблетки на 0,5 л води).

Хлоргексидину біглюконат ( гібітан ) – надає мікробоцідное або мікробостатіческое дію на бактерії (більшою мірою на Гр + , ніж на Гр- ) , дерматофіти , кандида. У зв’язку з деяким дією на збудників захворювань, що передаються статевим шляхом ( гонококи , трепонема , трихомонади) , може використовуватися для індивідуальної профілактики венеричних захворювань. Широко використовується як антисептик для обробки рук та операційного поля (0,5 % водно-спиртової розчин) , для промивання ран ( 0,05 % водний розчин) , а також як терапевтичний антисептик в хірургії , урології , офтальмології та інших областях медицини.

Йоду розчин спиртовий 5 і 10 % ( йодна настоянка ) – неорганічний препарат йоду , готується на 95 % етиловому спирті. Володіє універсальним спектром мікробоцідного дії , включаючи Гр + і Гр- бактерій , вірусів , грибів , найпростіших. Застосовується для профілактики інфікування пошкодженої шкіри. Може викликати токсичне і алергічне пошкодження шкіри.

Йодоформ – органічний препарат йоду , не розчиняється у воді , малорастворим в етанолі , розчинний в ефірі . При контакті з тканинами та мікроорганізмами вивільняє вільний йод. Застосовується як антисептичний засіб у 10 % мазі , присипці для лікування інфікованих ран , виразок , в стоматології – у складі пасти з тимолом – для пломбування каналів зубів. Можливі подразнення тканин , дерматит , алергічні реакції .

Йодинол – препарат з групи йодофори ( комплексних препаратів йоду з поверхнево – активними речовинами або з розчинними у воді полімерами ) . Протимікробна активність йодофори пов’язана з присутністю в цих комплексах іонізованого , а не молекулярного йоду. Іонізований йод не робить загальнотоксичної дії , але зберігає антисептичну , яке посилюється поверхнево- активними речовинами. Йодинол , зокрема , в якості поверхнево -активної речовини містить полівініловий спирт. Застосовується у вигляді 0,1 % водного розчину для гігієнічної антисептики рук , профілактики інфікування ран , опікових поверхонь , а також при лікуванні хворих з хронічним тонзилітом , хронічним періодонтитом і т.д.

Йодопірон – суміш комплексу полівінілпіролідон йоду з калію йодидом . Жовто -коричневий аморфний порошок, розчинний у воді ( повільно) . Використовується у вигляді 0,1 % , 0,5 % і 1 % розчинів як бактерицидний засіб для обробки рук хірурга і операційного поля , а також для лікування гнійних ран. Для обробки рук хірурга застосовують 0,1 % розчин , для обробки операційного поля і лікування гнійних ран – 0,5 % і 1 % розчини . Порошок йодопірона містить 6-8 % активного йоду. 1% розчин ( по активному йоду) готують в аптечних умовах; 0,1 % і 0,5 % розчини отримують з 1% розчину безпосередньо перед вживанням. Порошок йодопірона випускається у флаконах темного скла по 150 р. Зберігання : список Б. – в сухому , захищеному від світла місці. 1% розчин зберігають у флаконах або банках темного скла не більше 2 місяців.

Окислювачі

Перекис водню випускається у вигляді трьох препаратів : розчин перекису водню концентрований ( пергідроль ) містить до 31% перекису водню , використовується для приготування « робочих » розчинів; розчин перекису водню 3 % і гидроперит – комплексний препарат перекису водню та сечовини ( в таблетках) .

Перекис водню володіє майже універсальним протимікробну дію , добре переноситься шкірою та слизовими оболонками , не накопичується в організмі, не надає токсичного і алергічного дії , проявляє такі додаткові ефекти , як механічне очищення місця аплікації , дезодорація , стимуляція кровопостачання і регенерації тканин. Разом з тим швидко розкладається на світлі, при взаємодії з металами , органічними речовинами , лугами . Застосовується для дезінфекції , передстерилізаційного очищення інструментів , для профілактичної та терапевтичної антисептики при ангінах , стоматитах. З метою приготування 3% розчину для полоскання порожнини рота , глотки , промивання ран можна використовувати таблетки гідропериту .

Калію перманганат , як і перекис водню , має універсальним спектром мікробоцідного дії , але бруднить білизну , перев’язувальний матеріал і в даний час застосовується порівняно рідко у вигляді водних розчинів для полоскання рота і глотки ( 0,01-0,1 %) , промивання ран ( 0,1-0,5 %) , змазування виразкових і опікових поверхонь (2-5 %). До цих пір використовується антікандідозное дію препарату. Як сильний окислювач іноді використовується для промивання шлунка при отруєнні морфіном ( для перетворення морфіну в неактивний оксіморфін ) .

Кислоти

Кислота саліцилова проявляє бактерицидну і фунгіцидну дію у поєднанні з протизапальною , кератолитическим і подразнюють . Застосовується у вигляді 2-5% присипок , 1-10 % мазей , 0,1-1 % спиртового розчину

при шкірних захворюваннях мікозної і мікозного – бактеріальної природи . У зв’язку з кератолитическим й антисептичну дію входить ( в якості основного компонента) до складу мозольной рідини і мозольного пластиру. У деяких хворих спостерігається індивідуальна непереносимість саліцилової кислоти , що виявляється роздратуванням тканин і розвитком алергічних реакцій .

Кислота ундеціленовая володіє фунгіцидної і фунгістатичною активністю , може застосовуватися самостійно або в складі препаратів цінкундан , ундецін , мікосептін та інших при епідермофітії , дріжджових мікозах , а також для профілактики мікозів стоп.

Кислота борна надає мікробоцідное дію на бактерій ( включаючи синьогнійну паличку) і фунгіцидну дію. Використовується в розчинах при кон’юнктивітах , отитах , дерматитах , попрілостях . Слід мати на увазі , що кислота борна добре проникає через шкіру і слизові (особливо у дітей) , повільно виводиться і може викликати нудоту , блювоту , пронос , головний біль , судоми і навіть шок. Тому не застосовується у дітей , вагітних і годуючих жінок і все рідше у інших категорій хворих.

Луги

Аміаку розчин ( нашатирний спирт ) містить близько 10 % вільного аміаку. Антисептичну дію, пов’язану зі зміною рН в лужну сторону і з хорошими миючими властивостями , використовувався для механічної антисептики ( при митті рук). У зв’язку з різким подразнюючим дією може використовуватися для порушення дихального центру при непритомності .

Спирти

Спирт етиловий (етанол ) у високих концентраціях (95% і 70 % ) надає мікробоцідное і мікробостатіческое дію на Гр + та Гр- бактерії і деякі види грибів . Широко використовується як самостійно , так і в якості розчинника інших антисептичних засобів. За рахунок дратівної дії застосовується для обтирання та компресів. Останнім часом спирт як самостійний антисептик заборонений використовувати в медицині. Його слід використовувати лише в поєднанні з антисептиками інших груп.

Спирт пропіловий – безбарвна рідина з характерним алкогольним запахом , добре змішується з водою. Спектр протимікробної дії аналогічний етанолу , але дія проявляється при більш низьких концентраціях (починається з 13% , досягаючи максимуму до 50-60 %). Широко застосовується самостійно і в різних комбінаціях для профілактичної антисептики рук та шкіри в медицині та побуті.

Спирт ізопропіловий в 60-70 % концентраціях застосовується в тих же цілях , що і попередній засіб .

Альдегіди

Формальдегіду розчин ( формалін ) надає мікробоцідное і мікробостатіческое дію на бактерії , гриби , віруси , найпростіших. Має дезінфікуючу , антисептичну і дезодорує дією , зменшує пітливість (тобто є антиперспірантом ) .

Феноли

Фенол (кислота карболова ) надає мікробоцідное і мікробостатіческое дію на всі види Гр + і Гр- бактерій , гриби , віруси і найпростіших. Володіє дратівливою і дією припікання , всмоктується через слизові і пошкоджену шкіру і надає загальнотоксичну дію . Як дезінфектант використовується в 3-5 % розчинах . Як антисептик використовується і сам фенол , але особливо широко – його препарати , такі , як ваготіл , триклозан та ін

Ваготіл надає мікробоцідное і трихомонацидну дію, має прижигающим і судинозвужувальну дію , стимулює епітелізацію . У нерозведеному вигляді застосовується для припікань ерозій шийки матки , у водному розчині – для спринцювань . Для прискорення епітелізації використовується також при виразках , опіках.

Триклозан – органічне похідне фенолу , добре переноситься шкірою , слизовими оболонками , не токсичний, не алергенними. Володіє широким спектром мікробоцідного і мікробостатіческого дії . Використовується в якості дезодоранту , а також для хірургічної ( 0,2-0,5 % спиртові розчини ) і терапевтичної (до 5 %) антисептики.

Барвники

Метиленовий синій має бактерицидну дію на Гр + бактерії і іноді застосовується в якості антисептика при піодермії , а також для промивання сечового міхура при циститах . Основне застосування знаходить як антидот при гострому отруєнні ціанідами ( переводить гемоглобін в метгемоглобін , який , зв’язуючись з ціанідами , переводить їх у неактивний ціанметгемоглобін ) .

Діамантовий зелений надає мікробоцідное дію на Гр + та Гр- бактерії , дерматофіти , кандида. Застосовується в 1-2% водних і спиртових розчинах для профілактики інфікування дрібних травм шкіри , а також при легких гнійно – запальних захворюваннях шкіри.

Етакрідіна ( риванол ) має бактерицидну дію на стрептококи , проте багато штами стафілококів резистентні . Як правило , Гр- збудники не чутливі. Використовується в дерматології у складі мазей , паст , присипок .

Солі важких металів

Цинку окис надає антисептичну , в’яжучий і підсушує. Ця речовина нерозчинна у воді і етанолі , застосовується самостійно і в комбінації з іншими антисептиками у вигляді 10-25 % присипок , мазей , паст , лініментів при різних шкірних захворюваннях.

Цинку сульфат надає антисептичну і в’яжучу дію , легко розчинний у воді , використовується у вигляді очних крапель при кон’юнктивітах , розчинів для промивань при уретритах і вагінітах .

Срібла нітрат , як і всі препарати срібла , має мікробоцідний тип дії та ШСД , включаючи Гр + і Гр- бактерій і хламідій , має в’язку і прижигающим ефектом . Застосовується в 1-2% розчинах для профілактики бленореї і хламідіозная кон’юнктивіту у новонароджених , при трахоме , гострому кон’юнктивіті ; в 2-10 % розчинах – для припікання ран і виразок з надлишковими грануляціями , при гіперпластичних риніті і ларингіті .

Срібла протеінат ( протаргол ) має антисептичну , протизапальну і в’язким дією. Застосовуються водні розчини в офтальмологічній , оториноларингологічній і урологічній практиці .

Детергенти

Детергенти , або катіонні мила , володіють миючим і антисептичну дію ( detergeo – прати , чистити ) .

Церігель має в якості діючого початку цетилпіридиній хлорид , катіонна четвертинного – амонієве , поверхнево -активна речовина . Використовується як антисептик для обробки рук медичного персоналу.

Роккал в якості діючої речовини має бензалконіум хлорид , активний відносно Гр + і Гр- бактерій , кандида ; в комбінації з етиловим спиртом діє і на віруси. Використовувався як антисептик для обробки рук хірурга , операційного поля , використовується при лікуванні хворих з шкірними захворюваннями. Входить до складу очних крапель , дезодорантів та косметичних препаратів. Бензалконіум володіє також сперміцидним ефектом і є чинним початком контрацептивного препарату « фарматекс ».

Мірамістин – новий антисептик з класу детергентів , активний щодо Гр + і Гр- мікрофлори , ряду внутрішньоклітинних патогенів , у тому числі хламідій , вірусів (простого герпесу , грипу , ВІЛ) , деяких грибів . Підвищує функціональну активність імунних клітин , прискорює загоєння ран. Широко використовується в 0,01 % розчині в різних областях медицини. Так , наприклад , в хірургічній практиці , серветки , змочені зазначеним розчином , накладаються на рани і обпечені поверхні ; для екстреної профілактики захворювань, що передаються статевим шляхом , розчин вводиться інтрауретрально . У стоматологічній практиці розчин мірамістину широко використовується для полоскань при стоматитах і перідонтітах , а також для обробки знімних зубних протезів .

Багатокомпонентні засоби

Виркон – багатокомпонентний сучасний дезінфектант , що включає органічні кислоти , каталізатори , окислювачі , сурфактант . Кожен з компонентів забезпечує послідовне дію , що веде до руйнування оболонок мікроорганізмів , до руйнування нуклеїнових кислот. Спектр дії надзвичайно широкий і включає більше 240 штамів бактерій , патогенні гриби , віруси ( в тому числі гепатиту і вірусу імунодефіциту людини (ВІЛ -інфекція )) . Абсолютно безпечний для людини і навколишнього середовища (так як піддається біологічному розкладанню ) .

 ТЕХНІКА ОБРОБКИ РУК

Згідно з наказом ? 215 МОЗ РФ для обробки рук хірурга дозволені такі препарати: первомур ( рецептура С-4 ) і хлоргексидину біглюконат ( гібітан ) . В даний час з’явилося безліч нових засобів для обробки рук хирурга ( Ахдез 3000, велтосепт , Октеніман , Ліжень , декосепт та ін), всі вони мають сертифікат і дозволені до застосування в лікувально -профілактичних установах .

Незалежно від способу обробки рук хірурга , спочатку виконується механічне миття рук з одноразовим або рідким милом (без щітки) під теплою проточною водою. Як правило , проводиться 3- кратне намилювання рук хірурга . Перше – гігієнічне , або звичайне , виконується до ліктів. Друге і третє – спеціальні , в ході яких ретельно миють нігтьові фаланги , міжпальцеву , шкірні складки пальців. У ході миття мило має постійно перебувати в руках лікаря . Другий раз руки милять до верхньої третини передпліччя , третій – до середньої третини передпліччя. Щоразу мило змивають теплою проточною водою , причому руки тримають таким чином , щоб струмені води стікали по напрямку до ліктьового суглобу , тобто від чистого до брудного . Після закінчення миття рук залишки мила кладуть у спеціальний лоток ( в цілому руками останнього) , а водопровідний кран ( змішувач ) закривають ліктем. Потім лікар повинен осушити руки стерильними серветками в такій послідовності . Спочатку осушують долонну поверхню пальців і кисті лівої руки , потім правою (напрям рухів серветки має від кінчиків пальців до лучезапястному суглобу ) . Потім – тильну поверхню пальців і кисті правої руки , потім лівою . В останню чергу осушують шкірні покриви передпліч до кордону середньої та нижньої третини. Далі руки обробляють різними антисептичними засобами залежно від способу обробки рук хірурга .

Обробка рук розчином рецептури С-4 ( первомуром )

Первомур – це суміш перекису водню і мурашиної кислоти. Рецептуру « С-4 » готують з необхідної кількості перекису водню і мурашиної кислоти , які змішують у скляній посудині з притертою пробкою. Останній поміщають в холодильник на 2 год , періодично струшуючи бутель . При взаємодії даних препаратів утворюється надмуравьіной кислота , що надає сильну бактерицидну дію. Отриманий розчин , зберігають не більше доби в скляній посудині з герметичною пробкою в прохолодному місці. Для обробки рук використовують 2,4 % розчин рецептури «С- 4». З « маточного » розчину можна приготувати до 10 л робочого розчину , розбавивши його дистильованою водою ( табл. 4-1 ) .

Робочий розчин придатний до застосування протягом однієї доби . Після попереднього миття рук з милом під проточною водою , осушення їх стерильними серветками , лікар занурює руки в розчин « первомуром » в спеціальному тазу і виробляє миття рук до кордону середньої та нижньої третини передпліч протягом

Таблиця 4-1 . Кількість інгредієнтів для приготування рецептури « С-4 » 1 хв. Потім повторно осушує руки стерильними серветками і одягається в стерильне операційний білизна (халат і рукавички) .

Обробка рук розчином хлоргексидину біглюконат ( Гібітан , Дезин , Дезіскраб ) . Хлоргексидину біглюконат випускається у вигляді 20 % водного розчину. Для обробки рук використовують 0,5 % спиртовий розчин препарату. Для отримання розчину препарат розводять у 70 % етиловому спирті в співвідношенні 1:40 . Після попереднього миття рук з милом і подальшого осушення стерильною марлевою серветкою лікар бере стерильні серветки , змочені 0,5 % спиртовим розчином хлоргексидину біглюконат і послідовно обробляє руки. Спочатку протирається долонна поверхню пальців і кисті однієї руки , потім – іншої руки (напрям рухів серветки має від кінчиків пальців до лучезапястному суглобу ) . Потім обробляється тильна поверхню пальців і кистей обох рук. Слідом обробляються передпліччя до кордону середньої та нижньої третини обох рук. Час обробки рук хірурга розчином хлоргексидину біглюконат становить 2-3 хв. Потім лікар одягається в стерильний хірургічний халат і стерильні рукавички.

Обробка рук різними сучасними препаратами

Засіб « Ахдез 3000» – готовий до застосування шкірний антисептик у вигляді безбарвної прозорої рідини з характерним запахом. В якості діючих речовин містить спирт етиловий синтетичний ректифікований (79%) , хлоргексидину біглюконат (0,5 %) в якості діючих речовин , а в якості функціональних добавок : гліцерин (0,5 %) , касторове масло ( 0,2 %) , отдушку і воду.

Засіб « Октеніман » – готовий до застосування розчин у вигляді прозорої , пофарбованої у світло- синій колір , рідини із слабким запахом спирту. Містить : 1- пропанолу 40% , 2- пропанолу 30% і октенідін дигідрохлориду 0,1 % в якості діючих речовин , а також функціональні добавки.

Засіб « Велтосепт » – прозора безбарвна рідина , готова до застосування . В якості діючої речовини містить клатрат четвертічноаммоніевого з’єднання з карбамідом в етиловому спирті.

Засіб « Ліжень » – готовий до застосування шкірний антисептик у формі прозорої рідини зеленого кольору із запахом віддушки і ізопропілового спирту. В якості діючих речовин містить клатрат Дідецілдіметіламмоній броміду з сечовиною – 0,1 % і ізопропіловий спирт – 63 %; крім того , до складу засобу входять функціональні добавки.

Засіб « декосепт Плюс » – готове до застосування дезінфікуючий засіб у вигляді прозорої рідини синього кольору зі спиртовим запахом. В якості діючих речовин містить в 100 г розчину 44,7 г 2 – пропанолу , 21,9 г 1 – пропа -Нола і 0,2 г бензалконіум хлориду ; крім цього до складу засобу входять пом’якшувальні шкіру рук компоненти , віддушка , барвник.

Засіб « Лізанін » – готовий розчин у вигляді прозорої безбарвної рідини із слабким спиртовим запахом , активні речовини : спирт етиловий синтетичний ректифікований , четвертинних – амонієві сполуки і пом’якшувальні шкіру компоненти .

Засіб « Лізанол » – готовий до застосування шкірний антисептик у формі безбарвної прозорої рідини . В якості діючих речовин містить

ізопропіловий спирт ( 75%) , алкілдиметилбензиламоній хлорид ( 0,1 %); крім того , до складу засобу входять функціональні добавки. Випускається в пластикових флаконах місткістю 1 л .

Засіб « Октенідерм » – готовий до застосування розчин у вигляді прозорої безбарвної рідини із запахом спирту. Містить : 1- пропанолу 30% , 2- пропанолу 45% і октенідін дигідрохлориду 0,1 % в якості діючих речовин , а також функціональні добавки.

Обробка рук хірурга усіма перерахованими вище засобами здійснюється однотипно , за наступною методикою.

Після попереднього миття рук з милом під теплою проточною водою і подальшим їх осушенням стерильною марлевою серветкою , сестра наносить на долоні поверхні кистей рук хірурга 3-5 мл засобу ( з перерахованих вище ) або засіб наносять за допомогою спеціального настінного дозатора ( рис. 4-1 ) .

Рис . 4-1 . Загальний вигляд настінного дозатора засобів для обробки рук хірурга

Необхідно втирати його в шкіру кистей і передпліч протягом 2,5 хв ( підтримуючи шкіру рук у вологому стані) ; після цього знову наносять 5 мл засобу на долоні поверхні рук і втирають його в шкіру кистей рук і передпліч протягом 2,5 хв . Загальний час обробки становить 5 хв. При цьому треба стежити за тим , щоб протягом всього часу втирання препарату руки залишалися вологими , і всі ділянки шкіри досить змочувалися .

• Долоня до долоні .

• Права долоня на тильній стороні лівої кисті .

• Ліва долоня на тильній поверхні правої кисті.

• Долоня до долоні рук зі схрещеними розчепіреними пальцями.

• Тильна поверхня зігнутих пальців однієї руки по долонній поверхні іншої руки , поперемінно .

• Колоподібне розтирання правого великого пальця у закритій долоні лівої руки і навпаки.

• Колоподібне втирання вперед та назад зімкнутих кінчиків пальців правої руки і лівої долоні , і навпаки.

Потім рухи повторюють до закінчення часу експозиції ( на кожній позиції – по п’ять разів). Стерильні халат і рукавички надягають після повного висихання препарату.

Прискорений спосіб обробки рук хірурга

В амбулаторній практиці або у вимушених (наприклад , військово – польових ) умовах для прискореної обробки рук лікаря застосовують плівкоутворювальний препарат « Церігель ». До його складу входять: полівінілбутірол і 96 % розчин етилового спирту. Руки ретельно миють теплою проточною водою з милом , ретельно осушують стерильною серветкою , а потім на долоню наносять 3-5 мл препарату і швидко розтирають його по всій поверхні шкіри пальців , кистей і нижньої третини передпліч. Напівзігнуті пальці тримають у розведеному положенні протягом 2-3 хв до утворення захисної плівки на поверхні шкіри, що володіє вираженою бактерицидною дією . Після операції плівка легко знімається марлевими серветками , змоченими 70 % розчином етилового спирту.

 СТЕРИЛІЗАЦІЯ ІНСТРУМЕНТІВ

Стерилізація інструментів і перев’язувального матеріалу включає наступні етапи:

• передстерилізаційне підготовка ;

• укладання та підготовка до стерилізації ;

• стерилізація ;

• зберігання стерильного матеріалу.

Передстерилізаційна підготовка хірургічних інструментів.

Всі інструменти після операції повинні піддаватися дезінфекції . Для цього використані інструменти збирають в операційній до спеціального таз для брудних інструментів. Потім їх несуть в мийну , де є спеціальна закрита ємність з розчином дезінфікуючого засобу (наприклад : 0,1 % розчин « Жавеліон » , час експозиції – 60 хв; або 5 % розчин « Аламінола » – 60 хв; або 2% розчин « Біанол »- 15 хв; або 2% розчин« Діамант » – 60 хв; або 10 % розчин« Гігасепт ФФ » – 60 хв; 1% розчин« СТЕРАНІОС 20% концентрований »- 15 хв і т.д.) , брудні інструменти занурюють у дезінфікуючий розчин , розбірні інструменти дезінфікують в розібраному стані. Потім їх миють під теплою проточною водою ( в окремій раковині ) йоржами і щітками. Потім занурюють в емальовану ємність з миючим розчином « А» або « Б». Склад миючого розчину « А»: 27,5 % розчин перикиси водню – 17 м. , миючий засіб «Прогрес , Новина , Астра , Лотос та ін » – 5,0 м. , дистильована вода – 978 мл . Склад миючого розчину « Б»: 3% розчин перекису водню 200 мл , миючий засіб «Прогрес , Новина , Астра , Лотос та ін » – 5,0 г , дистильована вода – 795 мл . Температура миючого розчину – 50 ° С , час експозиції – 15 хв. Після замочування інструменти миють у миючому розчині йоржами , щітками (особливо ретельно обробляють замки , зубчики , насічки ) . Потім інструменти обполіскують теплою проточною водою , а в кінці – дистильованою водою. Перед обполіскуванням в дистильованої воді необхідно провести контроль якості передстерилізаційного очищення виробів , шляхом постановки азопірамової або амідопіринової проби на наявність залишкових кількостей крові. Контролю підлягає 1% одночасно оброблених виробів одного найменування (але не менше трьох виробів). При виявленні залишків крові (позитивна проба) вся група виробів , від якої відбирали вироби для контролю , підлягає повторній обробці до одержання негативного результату.

Методи проведення проб на приховану кров

Амідопіринової проба

• Приготування розчину. Змішують рівні кількості 5% спиртового розчину амідопірину , 30% оцтової кислоти і 3% розчину перекису водню (по 2-3 мл).

• Техніка проведення . На стерильну вату наносять отриману суміш і протирають поршень шприца , циліндр із зовнішнього боку , голки , канюлю всередині. Потім заливають реактиви в циліндр шприца , пропускають їх через шприц на вату , перевіряючи циліндр. Надягають голку і роблять те ж саме , перевіряючи голку. За наявності крові на ваті з’являється синьо – зелене забарвлення . Воно може з’явитися і при реакції на потрійний розчин , хлорамін , лікарські речовини.

Азопірамова проба

• Техніка проведення . Готують 1,0-1,5 % розчин солянокислого аніліну в 95 % розчині спирту етилового . Його зберігають в холодильнику до 2 місяців , поза холодильника – не більше місяця. Перед постановкою проби змішують рівні об’єми азопіраму і 3% розчину перекису водню.

• Техніка проведення . Суміш використовувати протягом 1-2 годин Не перевіряти гарячі інструменти , не тримати розчин біля нагрівальних приладів і на яскравому світлі . При попаданні реактиву на кров протягом 1 хв з’являється фіолетове забарвлення.

Інструменти , після операції у хворих з анаеробної інфекцією , дезінфікують в 6% розчині перекису водню протягом 60 хв , а потім вони проходять стандартну предстерилизационную підготовку , як і інші інструменти.

Укладання і підготовка до стерилізації

Інструменти стерилізують повітряним ( в сухожарових шафах ) , паровим ( автоклавування) і хімічним методами. Для стерилізації в сухожарових стерилізаторах інструменти поміщають в металеві коробки ( при знятих кришках , кришки стерилізують поруч) або в упаковку з паперу мішечного непросочені ( закладають вже висушені інструменти) , або викладають їх на спеціальні грати стерилізатора і виробляють просушку інструментів при температурі – 80-85 ° С , при відкритих дверцятах стерилізатора , до повного випаровування вологи з інструментів ( рис. 4-2 , рис. 4-3 ) . Для стерилізації парою під тиском інструменти кладуть у металеві бікси ( вистелені двошарової бавовняної простирадлом ( рис. 4-4 , рис. 4-5) або подвійні полотняні мішки (виготовлені з бязі ) .

Рис . 4-2 . Загальний вигляд сухожаровий стерилізатора

Рис . 4-3 . Загальний вигляд сухожаровий стерилізатора з хірургічними інструментами на решітках стерилізатора (з метою просушування )

Рис . 4-4 . Загальний вигляд завантаженого металевого бікса

Рис . 4-5. Загальний вигляд завантаженого бікси парового стерилізатора

Перед хімічним методом стерилізації хірургічні інструменти , після передстерилізаційної обробки , викладають на чисті простирадла і виробляють просушку при кімнатній температурі до повного випаровування вологи з поверхонь інструментів.

Стерилізація хірургічних інструментів

Інструментарії для медичних маніпуляцій за ризиком мають наступні відмінності .

• Критичні – проникають у стерильні тканини або судини : імплантати , скальпелі , голки , інші хірургічні інструменти і т.д. Стерилізація – спороцидні хімічні речовини , тривалий контакт .

• полукрітіческіе – стикаються зі слизовими оболонками (за винятком стоматологічних інструментів) : гнучкі ендоскопи, ларингоскопи , ендотрахеальні трубки , а також інші аналогічні інструменти. Дезінфекція високого рівня – спороцидні хімічні речовини , короткочасний контакт.

Термометри , ванни для гідротерапії . Дезінфекція середнього рівня – лікарняні дезінфікуючі засоби із зазначенням у маркуванні про наявність туберкулоцидну активності .

• Некритичні – ( стикаються з неушкодженою шкірою) : стетоскопи , настільні прилади , підкладні судна та ін Дезінфекція низького рівня – лікарняні дезінфікуючі засоби без зазначення в маркуванні про наявність туберкулоцидну активності .

Стерилізація хірургічних інструментів здійснюється декількома методами : повітряним ( сухожарові шафи ) , паровим ( автоклавування) і хімічним.

Повітряний – виробляється в повітряних стерилізаторах , які знаходяться в стерилізаційної кімнаті операційного блоку або перев’язувальних хірургічних відділень ( рис. 4-6 , рис. 4-7) , за двома режимами :

• при 180 ° С ( +2 ° С або -10 ° С ) протягом 60 хв;

• при 160 ° С ( +2 ° С або -10 ° С) протягом 150 хв .

Рис . 4-6. Загальний вигляд повітряного стерилізатора зовні

Рис . 4-7 . Загальний вигляд повітряного стерилізатора всередині

Обидва режими рекомендуються для виробів з металу , скла та силіконової гуми.

Паровий – виробляється в парових стерилізаторах ( рис. 4-8 , рис. 4-9 ) , які розташовуються в спеціальному приміщенні – автоклавної , по «основному » режиму стерилізації :

• при 132 ° С (± 2 ° С ) під тиском 2 атм . ( 0,2 МПа ) протягом 20 хв .

Даний режим стерилізації рекомендується для виробів корозійно- стійкого металу , скла , виробів з текстильних матеріалів.

Хімічний – проводиться при повному зануренні в розчин у закритих ємностях з пластмаси або покритих емаллю на час стерилізаційної витримки , після чого виріб повинен бути промите стерильною водою.

Рис . 4-8 . Загальний вигляд парового стерилізатора зовні

Рис . 4-9 . Загальний вигляд парового стерилізатора всередині

Деякі препарати для хімічної ( рідинної ) стерилізації

6% розчин перекису водню – проводиться за двома режимами :

• при температурі 18 ° С – 360 хв (± 5 хв;

• при температурі 50 ° С – 180 хв (± 5 хв) , температура в процесі стерилізації не підтримується. Розчин перекису водню використовується протягом 7 діб з дня його приготування за умови зберігання його в закритій ємності в темному місці.

8% розчин засобу « Лізоформін 3000». До складу засобу в якості діючих речовин ( ДВ) входять: 9,5 % глутарового альдегіду, 7,5 % гліоксалю і 9,6 % Дідецілдіметіламмоній хлориду ( ЧАС) , а також інші компоненти – 6% алкилполиэтиленгликолевого ефіру , 1,8 % запашного масла , 0,5 % стабілізатора і барвника Е133 . Засіб має бактерицидні (у тому числі туберкулоцидні ) , Віруліціднимі (у тому числі щодо збудників парентеральних вірусних гепатитів та ВІЛ – інфекції) , фунгіцидними ( щодо грибів роду Кандіда і тріхофітонамі ) і спороцидними властивостями. Для приготування 1 л робочого розчину , призначеного для стерилізації медичних інструментів, до 920 мл дистильованої води , нагрітої до температури 50 ± 1 ° С , додають 80 мл вихідного концентрату , що має кімнатну температуру ( не нижче 20 ° С) , і швидко перемішують. Стерилізацію інструментів проводять в стерильних емальованих ( без пошкодження емалі) або пластмасових ємностях , що закриваються кришками . Вироби, що підлягають стерилізації , занурюють у розчин відразу ж після його приготування. Стерилізацію здійснюють по одному з вказаних нижче температурних режимів ( час експозиції – 1 год):

• при температурі розчину 40 ° С , якщо протягом усього часу стерилізаційної витримки можливо підтримку заданого значення температури (в термостатіруемого умовах ) ;

• при початковій температурі розчину 50 ° С , якщо в процесі стерилізаційної витримки температура розчину не підтримується. У разі застосування другого режиму ( початкова температура розчину 50 ° С) стерилізацію проводять при температурі повітря в приміщенні не нижче 20 ° С в ємностях , що містять не менше 2 л робочого розчину засобу , при співвідношенні об’єму розчину до об’єму, що займають вироби, не менше ніж 5:1. При цьому допускається падіння температури розчину за час стерилізаційної витримки не нижче ніж до 35 ° С. Після закінчення стерилізаційної витримки вироби витягують стерильними пінцетами ( корнцангами ) з розчину кошти і переносять останні в стерильну ємність зі стерильною питною водою для відмивання виробів від залишків засобу. Ємності , використовувані при відмиванні стерильних виробів від залишків засобу , попередньо стерилізують паровим методом при температурі 132 ° С протягом 20 хв. Воду для відмивання виробів стерилізують у скляних ємностях аналогічно. Відмивши здійснюють при повному зануренні виробів у воду при співвідношенні об’єму води до об’єму, що займають вироби, не менше , ніж 3:1. Інструменти з металів відмивають послідовно у двох ємностях з водою по 5 хв. Вироби , в конструкцію яких входять полімерні матеріали (крім гнучких ендоскопів ) , відмивають послідовно у двох водах по 10 хв . Відмиті від залишків засобу стерильні вироби витягують з води , поміщають в стерильну простирадло і перекладають вироби в стерильну стерилізаційну коробку , викладену стерильною простирадлом. Термін зберігання простерилізованих виробів не більше трьох діб. Всі маніпуляції у процесі стерилізації та відмивання виробів від стерилізуючого кошти проводять в асептичних умовах. Роботу здійснюють в стерильних рукавичках. Термін придатності робочих розчинів – 14 днів.

6% розчин засобу « Новодез Форте» . До складу засобу в якості діючих речовин входять: 40% алкілдиметилбензиламоній хлориду і 11% глутарового альдегіду . Для приготування 1 л робочого розчину необхідно додати 60 мл концентрату препарату кімнатної температури до 940 мл дистильованої води , підігрітої до 55 ° С і швидко перемішати. Стерилізацію інструментів проводять в стерильних емальованих ( без пошкодження емалі) або пластмасових ємностях , що закриваються кришками . Вироби, що підлягають стерилізації , занурюють у розчин відразу ж після його приготування. Роз’ємні вироби занурюють у розчин в розібраному вигляді. Стерілізуемие вироби повинні бути вільно розміщені в ємності з розчином , товщина шару розчину над виробами повинна бути не менше 1 см. Стерилізацію проводять при температурі повітря в приміщенні не нижче 20 ° С з , використовуючи ємності , що містять не менше 2 л розчину засобу. Режим стерилізації хірургічних інструментів , виготовлених з металу: 6% розчин засобу « Новодез Форте» з початковою температурою – 50 ° С (± 1 ° С ) , час експозиції – 60 хв (Примітка: за час стерилізаційної витримки допускається падіння температури розчину не нижче ніж до 35 ° С). При проведенні стерилізації всі маніпуляції виконують , дотримуючись асептичні умови , використовуючи стерильні ємності для води , воду та інструменти , а також стерильні рукавички для захисту шкіри рук. Відмивши інструментів після стерилізації здійснюється так само як при обробці засобом « Лізоформін 3000». Термін придатності робочих розчинів становить 14 діб за умови зберігання у закритих ємностях у темному місці.

Засіб « Делансаль » – готова до застосування прозора безбарвна рідина без механічних домішок з характерним запахом , що містить 2,3-2,7 % глутарового альдегіду в якості діючої речовини , а також буферні компоненти та інгібітор корозії; рН = 6,0-6 , 5 . Засіб має Віруліціднимі , бактерицидними (у тому числі туберкулоцидні і спороцидними ) і фунгіцидними властивостями. Стерилізацію хірургічних інструментів проводять шляхом занурення в розчин дезинфікуючого засобу (температура розчину не менше 20 ° С) стерілізуемих предметів на 10 год ( 600 хв). Засіб можна використовувати багато разів , якщо його зовнішній вигляд не змінився. При перших ознаках зміни зовнішнього вигляду засоби ( зміна кольору , помутніння тощо) розчин необхідно замінити . Процес відмивання стерилізованих інструментів не відрізняється від засобу « Лізоформін 3000».

Засіб « Біанол » – прозорий рідкий концентрат яскраво -синього кольору; має слабкий специфічний запах. Містить глутаровий альдегід , гліоксаль і алкілдеметіламмоній хлорид в якості діючих речовин , а також поверхнево -активна речовина , барвник і воду ( рН концентрату – 4,2 ± 0,6 ) . Засіб має бактерицидні , Віруліціднимі , фунгіцидними і спороцидними властивостями. Чи не кородує метали і не пошкоджує термолабільние матеріали. Для стерилізації інструментів застосовують 20% розчин засобу « Біанол » ( для приготування 1 л розчину необхідно до 800 мл дистильованої води додати 200 мл концентрату ), час стерилізаційної витримки в 20% розчині при температурі 21 ± 1 ° С становить 10 ч. Робочі розчини можна застосовувати багаторазово протягом 10 діб з моменту їх приготування , якщо їх вигляд не змінився. При перших ознаках зміни зовнішнього вигляду засоби ( зміна кольору або помутніння розчину , поява нальоту на стінках ємностей , освіта пластівців або осаду тощо) розчин необхідно замінити . Щоб уникнути розбавлення засобу при багаторазовому його використанні занурювати в розчин слід тільки сухі вироби . Відмивши виробів після стерилізації стандартний.

Засіб « Кліндезін 3000» – готова до застосування прозора безбарвна рідина . Містить 2,7 % глутарового альдегіду в якості діючої речовини , а також інші компоненти; рН = 6,0-7,5 . Засіб має Віруліціднимі , бактерицидними (у тому числі туберкулоцидні і спороцидними ) і фунгіцидними властивостями. Стерилізацію інструментів проводять розчином , температура якого не менше 20 ° С , протягом 8 год ( 480 хв). розчин для стерилізації можна використовувати багато разів (не більше 30 діб) , якщо немає ознак зміни зовнішнього вигляду. Відмивши виробів після стерилізації стандартний .

Засіб « Кліндезін -Форте » – продукт, що складається з двох рідких компонентів ( розчин, що містить глутаровий альдегід , та доданий до нього активатор ) , що змішуються перед застосуванням для отримання активованого розчину. Основний компонент – безбарвна прозора рідина з типовим запахом глутарового альдегіду і домішкою аромату перцевої м’яти , що містить 2,5% глутарового альдегіду в якості діючої речовини ; рН = 3,2-4,3 ; розфасований у пластмасові флакони місткістю 3,8 л . До кожного флакона з розчином, що містить глутаровий альдегід , додається маленький пластмасовий флакон зі 149 г активатора , у вигляді прозорої рідини блакитного кольору , що містить лужні інгредієнти , інгібітор корозії ( нітрит натрію) , барвники. Активоване (робочий ) розчин засобу являє собою рідину зеленого кольору; рН = 7,5-8,5 . Термін придатності активованого розчину засоби ( після змішування компонентів) становить 28 діб за умови його зберігання в закритих ємностях в темному прохолодному місці. Активоване розчин засобу має Віруліціднимі , бактерицидними (у тому числі туберкулоцидні і спороцидними ) і фунгіцидними властивостями. Фіксує органічні забруднення , що вимагає їх ретельного видалення з виробів до дезінфекції та стерилізації. Стерилізацію інструментів проводять розчином , температура якого не менше 20 ° С , протягом 10 год ( 600 хв). Відмивши виробів після стерилізації стандартний.

Засіб « Деконекс 50 ПЛЮС » – концентрат зеленого кольору , що містить в якості діючих речовин Дідецілдіметіламмоній хлорид 12% , глутаровий альдегід 9,5 % , а також інші компоненти : неіогенние ПАР , інгібітори корозії. Засіб виявляє бактерицидну (у тому числі туберкулоцидну ) , віруліцидну (включаючи збудників гепатитів та ВІЛ – інфекцію ) , фунгіцидну ( щодо грибів роду Кандіда і тріхофітонамі ) і спороцидну дію. Для приготування 1 л 8% розчину , призначеного для стерилізації виробів медичного призначення , до 920 мл дистильованої води ( нагрітої до температури 50 ± 1 ° С ) додають 80 мл концентрату , що має кімнатну температуру (не нижче +20 ° С) , і швидко перемішують . Стерилізацію проводять при температурі повітря в приміщенні не нижче +20 ° С в ємностях , що містять не менше 2 л розчину (з початковою температурою розчину +50 ° С) протягом 60 хв. При цьому допускається падіння температури розчину за час стерилізаційної витримки не нижче , ніж до 35 ° С. Для стерилізації розчин використовують одноразово. Відмивши виробів після стерилізації стандартний.

Засіб « СТЕРАНІОС 20% концентрований » – рідкий концентрат зеленого кольору зі специфічним запахом. До складу засобу входить глутаровий альдегід ( 20 %) в якості діючої речовини ( ДВ) , а також стабілізатор і інші допоміжні компоненти . Випускається в пластмасових ємностях по 250 і 500 мл . Засіб виявляє антимікробну дію на бактерії ( включаючи , мікобактерії туберкульозу та спорові форми бактерій) , віруси ( включаючи віруси парентеральних гепатитів та ВІЛ) , патогенні гриби. Фіксує органічні забруднення. Для стерилізації інструментів застосовують 2 % розчин засоби (1 частина концентрату і 9 частин дистильованої води) , час експозиції – 6 год ( 360 хв при температурі розчину – 21 ± 1 ° С). Робочий розчин засобу для стерилізації інструментів може бути використаний багаторазово , протягом 25 днів (за умови зберігання використовуваного розчину в прохолодному місці в щільно закритих ємностях щоб уникнути зниження концентрації розчину) , якщо його вигляд не змінився. При перших ознаках зміни зовнішнього вигляду (зміна кольору або помутніння розчину , поява нальоту на стінках ємностей , освіта пластівців або осаду тощо) розчин необхідно замінити до закінчення зазначеного терміну . Відмивання виробів після стерилізації стандартний.

Засіб « Ерігід Форте» – прозора безбарвна рідина , готова до застосування . В якості діючої речовини містить глутаровий альдегід – 2,5%. Засіб « Ерігід Форте» надає антимікробну дію на бактерії (включаючи мікобактерії туберкульозу) , віруси ( в тому числі збудників парентеральних гепатитів та ВІЛ – інфекції) , гриби роду Кандіда , дерматофіти , суперечки бацил . Стерилізацію хірургічних інструментів проводять протягом 6 год, температура розчину повинна бути 20-22 ° С. Розчин засобу може бути використаний багаторазово протягом 30 діб , якщо його вигляд не змінився. При перших ознаках зміни зовнішнього вигляду засоби ( зміна кольору або помутніння розчину , поява нальоту на стінках ємностей , освіта пластівців або осаду тощо) розчин необхідно замінити . Щоб уникнути розбавлення засобу при багаторазовому його використанні слід занурювати в розчин тільки сухі вироби . Відмивши виробів після стерилізації стандартний.

Зберігання стерильних хірургічних інструментів

Стерильний хірургічний інструмент зберігають у спеціальних шафах «Для зберігання стерильного матеріалу». Шафа повинна мати замок , ключі від якого знаходяться у медичного персоналу . Допуск до шаф із стерильним матеріалом має лише медперсонал. Якщо інструменти стерилізувалися в біксах , спеціальних стерилізаційних коробках ( викладених стерильною простирадлом ) , подвійних полотняних мішках або були туди поміщені після стерилізації (без упаковки ) будь-яким з методів стерилізації , то термін їх зберігання становить 2-3 доби ( за умови , що бікс , стерилізаційна коробка або мішок не розкриваються і герметично закриті! ) . Інструменти , які стерилізувалися без упаковки ( на решітках сухожарові шафі , хімічним методом стерилізації , паровим методом без упаковки) , повинні бути використані безпосередньо після стерилізації. Термін зберігання стерильних хірургічних інструментів , викладених на стерильний стіл , становить 6 ч. По закінченню цього часу хірургічні інструменти повинні повторно пройти стерилізацію будь-яким із запропонованих методів .

Контроль стерильності хірургічних інструментів. Контроль стерильності хірургічних інструментів здійснюється двома способами: прямим ( бактеріологічне дослідження мікробної обсіменіння хірургічних інструментів) і непрямим ( індикатори стерильності , кристалічні хімічні речовини з відомою температурою плавлення , термометри та ін.) В даний час найбільш поширеним способом непрямого контролю стерильності вважається використання стандартних хімічних індикаторів стерильності серії « Стерітест » для повітряних та парових стерилізаторів , а також індикаторів серії « Стерітест » для пакування ( бікс , стерилізаційна коробка , полотняний мішок і упаковка з паперу мішечного непросочені ) .

Прямий спосіб контролю стерильності

Правила відбору проб для контролю стерильності в лікувально -профілактичних установах

Забір проб на стерильність проводить операційна сестра під керівництвом співробітника бактеріологічної лабораторії , у стерильні ємності з дотриманням найсуворіших правил асептики безпосередньо перед проведенням операції .

Для контролю стерильності використовують такі поживні середовища:

• цукровий бульйон Хоттінгера (0,5 і 1% глюкози) ;

• тіогліколевую середовище;

• бульйон Сабуро .

Одночасний посів виробів на три вищевказані середовища обов’язковий. При посіві виробу або його частини безпосередньо в живильне середовище кількість середовища в пробірці ( колбі , флаконах і т.д. ) повинно бути достатнім для повного занурення виробу або його частини.

Посів в бульйон Хоттінгера і тіогліколевую середу витримують у термостаті при температурі 37 ° С , середовище Сабуро – при температурі 20-22 ° С. Посіви інкубують в термостаті протягом 14 діб .

Посіви на стерильність хірургічного інструменту

Хірургічний інструментарій за допомогою стерильного пінцета витягують з бікса або м’якої упаковки і цілком занурюють у пробірки з поживними середовищами. Як виняток в окремих випадках , якщо всі простерилізовані інструменти в одній упаковці великих розмірів ( голкотримачі , Ранорозширувачі і т.д.) , виробляють змив з поверхні інструменту марлевою серветкою (розміром 5X5 см , простерилізованою в паперовому пакеті чи чашці Петрі ) . Для зволоження серветок стерильний фізіологічний розчин розливають у стерильні пробірки по 2,0 мл . Серветку захоплюють стерильним пінцетом , зволожують фізіологічним розчином з пробірки , а після протирання досліджуваного об’єкта поміщають в пробірку з тиогликолевой середовищем. Аналогічні змиви з інших інструментів засівають у пробірки з середовищем Хоттінгера і Сабуро .

Облік результатів

Матеріал стерильний за відсутності зростання у всіх посівах. Матеріал не стерильний при зростанні мікрофлори.

Непрямий спосіб контролю стерильності

Індикатори серії « МедИС » для контролю роботи парових і повітряних стерилізаторів ( рис. 4-10 ) .

Індикатори ПАРОВОЇ СТЕРИЛІЗАЦІЇ хімічні одноразові з липким шаром на зворотному боці індикатора , закритим захисним папером , МедІС-120/45 , МедІС-126/30 , МедІС-132/20 призначені для оперативного візуального контролю дотримання критичних параметрів парової стерилізації – температури стерилізації , часу стерилізаційної витримки і наявності насиченої водяної пари , в камері парових стерилізаторів з видаленням повітря методом продування парою .

Індикатори паперові повітряної стерилізації хімічні багатопараметричні одноразові з липким шаром на зворотному боці індикатора ,

Рис . 4-10 . Індикатори парової стерилізації

Рис . 4-11 . Індикатори повітряної стерилізації

закритим захисним папером , МедІС-В-160/150 , МедІС-В-180/60 призначені для оперативного візуального контролю дотримання критичних параметрів повітряної стерилізації – температури і часу стерилізаційної витримки – в камері повітряних стерилізаторів з граничним відхиленнями температури ± 3 ° С. Класифікація індикаторів серії « МедИС ».

СТЕРИЛІЗАЦІЯ перев’язувального матеріалу І операційної білизни

Перев’язувальний матеріал і операційний білизна стерилізують парою під тиском ( автоклавування) або користуються готовими , стерилізованими в заводських умовах , матеріалом і білизною ( стерильні серветки , кульки , вата , бинт , одноразові рукавички , маска і медична шапочка ) . До перев’язувальних матеріалів відносяться: марлеві серветки , кульки , тампони , турунди , бинти , великі кишкові серветки , вата. Застосовують їх під час операції і перев’язки з метою осушення рани , зупинки кровотечі , для дренування або тампонування ран. Перев’язувальний матеріал готують з марлі , попередньо розрізаними на шматки прямокутної форми різного розміру. Марлю складають, підвертаючи вільні краї всередину , щоб з них не обсипалися волокна тканини. Для зручності певну кількість серветок пов’язують стопкою за допомогою тасьми з марлі , а кульки – в марлеві мішечки . Тампони – пов’язують в стопки по 5-10 штук , для зручності підрахунку . Перев’язувальний матеріал після використання дезінфікують і спалюють. До операційного білизні відносяться: рукавички , маска , медична шапочка , хірургічний костюм і халат , бахіли , простирадла і пелюшки .

Укладання і підготовка до стерилізації перев’язувального матеріалу і операційної білизни

Перев’язувальний матеріал , також як і операційний білизна , укладають у металеві бікси . За відсутності біксів допускається стерилізація перев’язувального матеріалу в двошарових полотняних мішках. У хірургічних стаціонарах найчастіше використовується « видова » закладка бікса , при якій в бікс укладають певний вид перев’язувального матеріалу або операційного білизни. До кришки бікса прикріплена бирка з клейонки з назвою вмісту , назви відділення , тут же проставляються : дата стерилізації , прізвище і під –

пись здійснює стерилізацію. Перед закладанням бікс вистилають чистою простирадлом (у два шари ) так , щоб вона закривала дно , стінки бікса і звішувалася через краї бікса . Далі проводять ятати бікса матеріалом , не забуваючи при цьому , укладати в різні відділи бікса індикатори стерильності . Потім завантажений матеріал вкривають зверху вільними краями простирадла і закривають бікс . « Віконця » бікса повинні бути відкриті для проникнення гарячої пари всередину.

Стерилізація перев’язувального матеріалу і операційної білизни

Виробляється в металевих біксах або двошарових полотняних мішках. Метод стерилізації – автоклавирование (гаряча пара під тиском). Режими стерилізації :

• при 132 ° С (± 2 ° С ) під тиском 2 атм . ( 0,2 МПа ) протягом 20 хв;

• при 120 ° С (± 2 ° С ) під тиском 1,1 атм. ( 0,11 МПа ) протягом 45 хв.

Зберігання перев’язувального матеріалу і операційної білизни

Відбувається в стерильних закритих біксах або двошарових полотняних мішках. Стерильність у звичайних біксах і двошарових полотняних мішках зберігається до 3 діб , а в біксах з фільтрами – до 20 діб і більше (залежно від різновиду бікса ) . Місце зберігання стерильного матеріалу описано в розділі « Зберігання стерильних хірургічних інструментів ».

Контроль стерильності перев’язувального матеріалу і операційної білизни

Прямий спосіб контролю стерильності

Посів на стерильність перев’язувального матеріалу. Бинти , ватні кульки , марлеві серветки , турунди і т.п. відбирають з різних місць бікс стерильним пінцетом. Дрібні вироби цілком занурюють у пробірки з поживними середовищами. Від бинтів ( внутрішніх частин) і великих марлевих серветок за допомогою стерильних ножиць відрізають шматочки і занурюють у пробірки з поживними середовищами. На кожний вид перев’язувального матеріалу використовують по дві пробірки кожного середовища .

Посів на стерильність хірургічного білизни. Простерилізованих і фламбірованние ножицями ( змоченими в спирті і проведеними через полум’я пальника ) за допомогою пінцета від хірургічного білизни відрізають невеликі шматочки тканини ( зав’язка , внутрішні шви і т.п.) і занурюють у пробірки ( колби ) з поживними середовищами , по можливості, не торкаючись стінок пробірки ( колби ) .

Непрямий спосіб контролю стерильності – див вище.

4.4 . СТЕРИЛІЗАЦІЯ шовний матеріал

Існує розсмоктується і не розсмоктується шовний матеріал. Розсмоктується натуральними нитками є нитки з кетгуту , є також і синтетичні розсмоктуються нитки з Дексон , вікрилу , окцілона та ін, з різними термінами розсмоктування. До нерассасивающіеся натуральним ниткам

відносяться нитки з натурального шовку ( в даний їм практично не користуються ) , до синтетичних – нитки з капрону , лавсану , дакрону , фторлона та ін Більшість відомого шовного матеріалу стерилізують γ – випромінюванням у заводських умовах. Випускається він стерильним в спеціальній упаковці або ампулах. Зберігають його при кімнатній температурі і витрачають в міру необхідності. Металевий шовний матеріал (дріт , дужки) стерилізують автоклавуванням (при температурі – 132 ° С, тиску – 2,0 атм. , Час стерилізації – 30 хв). Синтетичний шовний матеріал, зокрема капрон , стерилізують згідно з методичними рекомендаціями , підписаними начальником Головного епідеміологічного управління МОЗ СРСР М.І. Наркевичі 19 липня 1990 ( ? 15-6/34 ) .

Методичні рекомендації щодо стерилізації лигатурного шовного матеріалу

в лікувально -профілактичних установах

(Витяг )

1 . Загальні положення .

1.1 . Методичні рекомендації складені відповідно і в розвиток ОСТ 42-21-2-85 « Стерилізація та дезінфекція виробів медичного призначення. Методи, засоби і режими » .

1.2 . Методичні рекомендації призначені для персоналу лікувально -профілактичних установ , що займається підготовкою лигатурного шовного матеріалу до хірургічних маніпуляцій , а також фахівців сенітарно і дезінфекційних станцій .

1.3 . Методичні рекомендації поширюються на розсмоктується лігатурний шовний матеріал:

• нитки хірургічні шовкові кручені нестерилізовані ГОСТ 392-82 ;

• нитки хірургічні капронові кручені нестерильні ТУ 17 РСФСР

62-2040-79 ;

• шнури хірургічні поліефірні нестерильні ТУ 17 РСФСР 44-9762-85 . Далі: лігатурний шовний матеріал.

1.4 . Лігатурний шовний матеріал не підлягає передстерилізаційного очищення в лікувально -профілактичних установах .

1.5 . Лігатурний шовний матеріал готують до стерилізації у вигляді кісок , мотків , намотуючи на котушки , скляні палички і т.д.

1.6 . Стерилізацію лигатурного шовного матеріалу проводять паровим або в екстрених випадках хімічним ( 4,8 % розчином первомура ) методами , що не надають негативного впливу на фізико- механічні та експлуатаційні властивості ниток.

1.7 . Стерильний лігатурний шовний матеріал не слід зберігати в етиловому спирті , оскільки етиловий спирт не є стерилізуючим засобом.

2 . Стерилізація лигатурного шовного матеріалу водяним насиченим паром під тиском.

2.1 . Підготовлений шовний матеріал загортають у два шари пакувального матеріалу , регламентованого ОСТ 42-21-2-85 :

• в кількості , розрахованому на одну операцію . При можливості його поміщають в стерилізаційну коробку ( бікс , бікс з фільтром ) в одному шарі упаковки. На упаковці зазначають вид шовного матеріалу і його номер.

2.2 . Лігатурний шовний матеріал стерилізують водяним насиченим паром під надлишковим тиском при двох режимах:

• тиск – 1,1 кгс/см2 ( + 0,2 кгс/см2) , температура – 120 ° С ( +2 ° С) , час стерилізаційної витримки 45 хв ( + 3 хв) ;

• тиск – 2,0 кгс/см2 ( ± 0,2 кгс/см2) , температура – 132 ° С ( ± 2 ° С) , час стерилізаційної витримки 30 хв ( + 2 хв).

2.3 . Лігатурний шовний матеріал , простерилізувати в упаковці , зберігають у спеціальних шафах для стерильних виробів.

2.4 . Невикористаний стерильний лігатурний шовний матеріал у випадках порушення умов і термінів зберігання може бути повторно (ще один раз) простерилізований паровим методом при температурі 120 ° С.

3 . Стерилізація лигатурного шовного матеріалу 4,8 % розчином первомура .

3.1 . Для стерилізації лигатурного шовного матеріалу використовують 4,8 % розчин первомура .

3.2 . Первомур – препарат, що містить надмуравьіной кислоту і перекис водню ( активно діючі речовини) , а також мурашину кислоту і воду. Виходить при взаємодії мурашиної кислоти і перекису водню. Продукція, що випускається промисловістю перекис водню медичний містить 30-40 % основної речовини (ГОСТ 177-88 ) . Мурашина кислота має концентрацію 85-100 % ( ГОСТ 5848-73 ) .

3.3 . Первомур являє собою безбарвну рідину із запахом надмуравьіной кислоти з питомою вагою – 1,1 і рН – 0,6-1,3 . Змішується з водою і спиртом у всіх співвідношеннях. Розкладається з виділенням кисню.

3.4 . Стерилізацію лигатурного шовного матеріалу проводять в асептичних умовах : занурюють його в 4,8 % розчин первомура і витримують при температурі 18-20 ° С протягом 15 хв у закритому емальованому або скляному (з притертою пробкою ) ємності.

3.5 . По закінченні стерилізаційної витримки шовний матеріал для відмивання від стерилізуючого розчину ( стерильним пінцетом в асептичних умовах ) переносять послідовно у дві стерильні ємності з фізіологічним розчином , витримуючи в кожній по 5 хв. Потім шовний матеріал поміщають в стерильну ємність ( стерилізаційну коробку , викладену стерильною простирадлом , банку з притертою пробкою ) .

3.6 . Спосіб приготування стерилізуючого кошти. 4,8 % робочий розчин первомура готують у два етапи:

• отримання первомура ;

• приготування робочого розчину розведенням первомура водою.

3.6.1 . При приготуванні первомура у скляній колбі , вміщеній в каструлю з холодною водою , змішують перекис водню з мурашиної кислотою. Колбу залишають у холодній водяній бані на 1-1,5 год , періодично струшуючи її вміст. Первомур готують у день застосування .

3.6.2 . 4,8 % робочий розчин отримують розведенням первомура дистильованої або водопровідною водою . Робочий розчин готують в поліетиленовій або скляному посуді , куди спочатку наливають воду , а потім первомур . У такому посуді він може зберігатися протягом доби.

3.6.3 . Кількості перекису водню і мурашиної кислоти , необхідні для приготування первомура , представлені в табл. 4-7 .

Зважаючи на використання реактивів з широким діапазоном концентрації в табл. 1 включені їх кількості , розраховані для різних концентрацій як по перекису водню , так і по мурашиної кислоти . Тут же наводяться обсяги води , необхідні для отримання робочих розчинів .

3.6.4 . Робочий розчин первомура характеризується як 4,8 % за сумарним вмістом у ньому найбільш часто використовуваних у складі первомура 30-33 % перекису водню і 100% мурашиної кислоти.

4 . Методика контролю стерильності лигатурного шовного матеріалу.

4.1 . Правила відбору проб для контролю стерильності в лікувально -профілактичних установах .

4.1.1 . У лікувально -профілактичних закладах, які мають централізовані стерилізаційні , контролю на стерильність підлягає не менше 1% від числа одночасно простерилізованих зразків лигатурного шовного матеріалу одного найменування.

4.1.2 . У лікувально -профілактичних установах , що не мають централізованих стерилізаційних і здійснюють стерилізацію в хірургічних відділеннях , контролю стерильності підлягають не менше 3 зразків одного виду лигатурного шовного матеріалу.

4.1.3 . Забір проб на стерильність проводить операційна сестра під керівництвом співробітника бактеріологічної лабораторії .

4.1.4 . При централізації процесу стерилізації всі зразки лигатурного шовного матеріалу , що підлягають контролю , направляють в бактеріологічну лабораторію в упаковці , в якій здійснювали їх стерилізацію (пакети , стерилізаційні коробки – бікси , м’яка упаковка) . Перед доставкою в лабораторію стерильні зразки в упаковці додатково загортають у стерильну упаковку.

4.1.5 . При стерилізації шовного матеріалу у відділенні забір проб проводять у чистій операційній в стерильні ємності з дотриманням найсуворіших правил асептики.

4.2 . Посів на стерильність лигатурного шовного матеріалу.

4.2.1 . Перед посівом ємності з відібраними зразками шовного матеріалу в передбокснику протирають стерильною марлевою серветкою , рясно змоченою 6% розчином перекису водню , і залишають на 30 хв , потім вносять в бокс .

4.2.2 . Перед посівом моток лигатурного шовного матеріалу перекладають у стерильні чашки Петрі , розрізають на дрібні шматочки довжиною 1-2 см.

4.2.3 . Посів роблять у 2 пробірки з тиогликолевой середовищем і в 2 пробірки з бульйоном « Сабуро » , поміщаючи в кожну пробірку по 4-5 шматочків досліджуваного матеріалу.

4.2.4 . Висновок про стерильність досліджених зразків лигатурного шовного матеріалу роблять після інкубування в термостаті посівів на тіогліколевую середовище при температурі 32 ° С , на середу « Сабуро » – 22 ° С протягом 8 діб .

УТИЛІЗАЦІЯ БІОЛОГІЧНИХ ВІДХОДІВ

Санітарні правила і норми СанПіН 2.1.7.728-99 « Правила збору , зберігання та видалення відходів лікувально -профілактичних установ»

( затв. постановою Головного державного санітарного лікаря РФ від 22 січня 1999 ? 2). Дата введення : 22 марта 1999 Зміст (витяг ) .

1 . Область застосування .

1.1 . Справжні санітарні правила і норми розроблені на підставі Закону РРФСР « Про санітарно – епідеміологічне благополуччя населення » відповідно до «Положення про державний санітарно – епідеміологічний нормуванні » , затвердженим постановою уряду Російської Федерації від 5 червня 1994 ? 625 , та змін і доповнень до нього , затверджених постановою Уряду Російської Федерації від 30 червня 1998 р.? 680 .

1.2 . Справжні правила призначені для всіх лікувально -профілактичних закладів (ЛПЗ ) , організацій, що займаються збиранням, зберіганням , транспортуванням відходів охорони здоров’я , а також проектуванням і експлуатацією установок переробки , знешкодження і полігонів захоронення твердих відходів.

2 . Загальні положення .

2.1 . Справжні правила і норми (далі СанПіН) визначають правила збору , зберігання , переробки , знешкодження і видалення всіх видів відходів лікувально-профілактичних установ .

Під відходами лікувально -профілактичних установ розуміються всі види відходів , що утворюються в:

• лікарнях , ( загальноміських , клінічних , спеціалізованих , відомчих , у складі науково -дослідного , навчального інститутів) , поліклініках (у тому числі дорослих , дитячих , стоматологічних ) , диспансерах ;

• станціях швидкої медичної допомоги; станціях переливання крові ;

• установах тривалого догляду за хворими;

• науково -дослідних інститутах та навчальних закладах медичного профілю; ветеринарних лікарнях ; аптеках ; фармацевтичних виробництвах ;

• оздоровчих закладах ( санаторіях , профілакторіях , будинках відпочинку , пансіонатах ) ;

• санітарно -профілактичних установах ; установах судово -медичної експертизи;

• медичних лабораторіях (у тому числі анатомічних , патологоанатомічних , біохімічних , мікробіологічних , фізіологічних);

• приватних підприємствах з надання медичної допомоги.

2.2 . Для організації поводження з відходами та повсякденного контролю у великих і середніх лікувально -профілактичних установах (ЛПУ ) наказом керівника установи призначається відповідальний спеціаліст ( епідеміолог , головна медсестра , заст. Головного лікаря з технічних питань ) , який зобов’язаний пройти навчання в спеціалізованому центрі * за зверненням з відходами та отримати свідоцтво ( сертифікат) встановленого зразка на право організації робіт щодо поводження з відходами . У невеликих ЛПУ і комерційних установах навчання проходить керівник установи або його заступник . У разі відсутності даного спеціалізованого центру навчання і видачу свідоцтв встановленого зразка здійснює територіальний центр державного санітарно -епідеміологічного нагляду ( ЦГСЕН ) .

3 . Класифікація медичних відходів.

3.1 . Лікувально – профілактичний заклад незалежно від його профілю та ліжковою потужності в результаті своєї діяльності утворює різні за фракційним складом і ступеня небезпеки відходи.

3.2 . Всі відходи охорони здоров’я поділяються за ступенем їх епідеміологічної , токсикологічної та радіаційної небезпеки на п’ять класів небезпеки ( див. нижче).

Клас А. Безпечні відходи лікувально -профілактичних установ .

Відходи , що не мають контакту з біологічними рідинами пацієнтів , інфекційними хворими , нетоксичні відходи. Харчові відходи всіх підрозділів всіх відділень ЛПУ крім інфекційних ( в т.ч. шкірно – венерологічних ) , фтизіатричних . Меблі , інвентар , несправне діагностичне обладнання , що не містять токсичних елементів . Неінфікованих папір , кошторисів , будівельне сміття і т.д.

Клас Б. Небезпечні ( ризиковані ) відходи лікувально -профілактичних установ .

Потенційно неінфіковані відходи. Матеріали та інструменти , забруднені виділеннями в тому числі кров’ю. Патологоанатомічні відходи. Органічні операційні відходи (органи , тканини і т.п.). Всі відходи з інфекційних відділень (у т.ч. харчові ) . Відходи з мікробіологічних лабораторій , що працюють з мікроорганізмами 3-4 -ї групи патогенності . Біологічні відходи віваріїв .

Клас В. Надзвичайно небезпечні відходи лікувально -профілактичних установ .

Матеріали, що контактують з хворими особливо небезпечними інфекціями. Відходи з лабораторій , що працюють з мікроорганізмами 1-4 -ї груп патогенності . Відходи фтизіатричних , мікологічних лікарень. Відходи від пацієнтів з анаеробної інфекцією

Клас Г. Відходи лікувально -профілактичних установ , за складом близькі до промислових .

Прострочені лікарські засоби , відходи від лікарських та діагностичних препаратів , деззасоби , що не підлягають використанню , з вичерпаним терміном придатності. Цитостатики та інші хімпрепарати . Ртуть містять предмети , прилади та обладнання

Клас Д. Радіоактивні відходи лікувально -профілактичних установ .

Всі види відходів , що містять радіоактивні компоненти

4 . Загальні правила організації системи збору , тимчасового зберігання і транспортування відходів у ЛПУ.

4.1 . Організована на території ЛПУ система збору , тимчасового зберігання і транспортування відходів повинна складатися з таких ланок :

• збору відходів всередині медичного підрозділу ;

• транспортування і перевантаження відходів у ( між) корпусні контейнери ;

• тимчасового зберігання відходів на території ЛПУ ;

• транспортування ( між) корпусних контейнерів до місця знешкодження відходів.

Порядок проведення робіт для кожної ланки визначається відповідними розділами даних санітарних правил.

4.2 . До відходів , що утворюються на території лікувально -профілактичного закладу , в залежності від їх класу пред’являються різні вимоги по збору , тимчасового зберігання та транспортуванню .

4.3 . Змішання відходів різних класів на всіх стадіях їх збору , зберігання і транспортування неприпустимо.

4.4 . У кожному медичному підрозділі керівник спільно з відповідальним спеціалістом за збір відходів в даному медичному закладі з наявного персоналу призначає особу, відповідальну за збір відходів. Дана особа безпосередньо на місцях первинного збору відходів здійснює контроль за поводженням з відходами та виробляє герметизацію одноразових ємностей (пакетів , баків ) .

4.5 . До робіт, пов’язаних зі збором , тимчасовим зберіганням і транспортуванням відходів , не допускається залучення осіб , які не пройшли попереднього навчання .

4.6 . Навчання персоналу правилам безпечного поводження з відходами здійснюється відповідальним спеціалістом за збір відходів в даному медичному закладі .

5 . Правила збору відходів в медичних підрозділах .

5.1 . Виходячи з різного ступеня епідеміологічної , токсикологічної , радіаційної небезпеки до відходів кожного з класів пред’являються різні вимоги .

5.2 . Відходи класу А.

5.2.1 . Відходи класу А утворюються в наступних структурних підрозділах :

• палатні відходи відділень ( крім інфекційних , шкірно – венерологічних , фтизіатричних , мікологічних ) ЛПУ ;

• адміністративно – господарські приміщення ЛПУ ;

• центральні харчоблоки , буфети відділень ( крім інфекційних , кожновенерологіческій , фтизіатричних , мікологічних ) ;

• внекорпусной території лікувально -профілактичного закладу.

5.2.2 . Збір відходів класу А здійснюється в багаторазові ємності або одноразові пакети. Одноразові пакети розташовуються на спеціальних візках або всередині багаторазових баків. Заповнені багаторазові ємності або одноразові пакети доставляються до місць установки ( між) корпусних контейнерів і перевантажуються в контейнери , призначені для збору відходів даного класу. Багаторазова тара після збору і спорожнення підлягає миттю та дезінфекції.

5.2.3 . Великогабаритні відходи даного класу збираються в спеціальні бункери для великогабаритних відходів. Поверхні і агрегати великогабаритних відходів , що мали контакт з інфікованим матеріалом або хворими , піддаються обов’язковій дезінфекції .

5.3 . Відходи класу Б. 5.3.1 . Місця освіти:

• операційні ;

• реанімаційні ;

• процедурні , перев’язувальні та інші маніпуляційно -діагностичні приміщення ЛПУ ;

• інфекційні , шкірно – венерологічні відділення ЛПУ ;

• медичні та патологоанатомічні лабораторії ;

• лабораторії , що працюють з мікроорганізмами 3-4 -ї груп патогенності ;

• віварії , ветеринарні лікарні .

5.3.2 . Всі відходи , що утворюють у цих підрозділах , після дезінфекції збираються в одноразову герметичну упаковку.

5.3.3 . М’яка упаковка ( одноразові пакети ) закріплюється на спеціальних стійках ( візках ) .

5.3.4 . Після заповнення пакету приблизно на 3/ 4 з нього видаляється повітря і співробітник , відповідальний за збір відходів в даному медичному підрозділі , здійснює його герметизацію . Видалення повітря і герметизація одноразового пакету проводиться в марлевій пов’язці і гумових рукавичках.

5.3.5 . Органічні відходи, що утворюються в операційних , лабораторіях , мікробіологічні культури і штами , вакцини , вірусологічних небезпечний матеріал після дезінфекції збираються в одноразову тверду герметичну упаковку.

5.3.6 . Збір гострого інструментарію ( голки , пір’я ), що пройшов дезінфекцію , здійснюється окремо від інших видів відходів в одноразову тверду упаковку.

5.3.7 . Транспортування всіх видів відходів класу Б поза межами медичного підрозділу здійснюється тільки в одноразовій упаковці після її герметизації.

5.3.8 . У встановлених місцях загерметезіровать одноразові ємності (баки , пакети ) поміщаються в ( між) корпусні контейнери, призначені для збору відходів класу Б.

5.3.9 . Одноразові ємності (пакети , баки ) з відходами класу Б маркуються написом «Небезпечні відходи. Клас Б »з нанесенням коду підрозділу ЛПУ , назви установи , дати та прізвища відповідального за збір відходів особи .

5.4 . Відходи класу В.

5.4.1 . Місця освіти:

• підрозділи для пацієнтів з особливо небезпечними і карантинними інфекціями ;

• лабораторії , що працюють з мікроорганізмами 1-2 -ї груп патогенності ;

• фтизіатричні та мікологічні клініки (відділення).

5.4.2 . Всі відходи , які утворюються в даних підрозділах підлягають дезінфекції згідно з діючими нормативними документами.

5.4.3 . Збір відходів даного класу здійснюється в одноразову упаковку. М’яка упаковка ( одноразові пакети ) повинна бути закріплена на спеціальних стійках ( візках ) .

5.4.4 . Після заповнення пакету приблизно на 3/ 4 з нього видаляється повітря і співробітник , відповідальний за збір відходів в даному медичному підрозділі , здійснює його герметизацію з дотриманням вимог техніки безпеки з збудниками 1-2 -ї груп патогенності .

5.4.5 . Мікробіологічні культури і штами , вакцини повинні збиратися в одноразову тверду герметичну упаковку.

5.4.6 . Транспортування всіх видів відходів класу В поза межами медичного підрозділу здійснюється тільки в одноразовій упаковці після її герметизації.

5.4.7 . У встановлених місцях загерметезіровать одноразові ємності (баки , пакети ) поміщаються в ( між) корпусні контейнери, призначені для збору відходів класу В.

5.4.8 . Одноразові ємності (пакети , баки ) з відходами класу В маркуються написом « Надзвичайно небезпечні відходи. Клас В »з нанесенням коду підрозділу ЛПУ , назви установи , дати та прізвища відповідального за збір відходів особи .

5.5 . Відходи класу Г.

5.5.1 . Місця освіти:

• діагностичні підрозділи ;

• відділення хіміотерапії ;

• патологоанатомічні відділення ;

• фармацевтичні цехи , аптеки , склади ;

• хімічні лабораторії ;

• адміністративно -господарські приміщення.

5.5.2 . Ступінь токсичності кожного виду відходів даного класу визначається згідно з класифікатором токсичних промислових відходів та методичним рекомендаціям з визначення класу токсичності промислових відходів.

5.5.3 . Використані люмінесцентні лампи , ртутьсодержащие прилади та обладнання збирають у закриті герметичні ємності. Після заповнення ємності герметизуються і зберігаються в допоміжних приміщеннях. Вивозяться спеціалізованими підприємствами на договірних умовах.

5.5.4 . Збір, зберігання цитостатиків , що відносяться до відходів 1-2 -го класів токсичності , здійснюють відповідно до класифікатора токсичних промислових відходів та іншими діючими нормативними документами.

5.5.5 . Відходи класу Г , відносяться до 2 і 3- му класах токсичності, згідно з класифікатором токсичних промислових відходів , збираються і упаковуються в тверду упаковку , 4- го класу – в м’яку .

5.6 . Відходи класу Д.

5.6.1 . Місця освіти:

• діагностичні лабораторії (відділення) ;

• радіоізотопні лабораторії і рентгенівські кабінети .

5.6.2 . Збір , збереження, видалення відходів даного класу здійснюється відповідно до вимог правил роботи з радіоактивними речовинами та іншими джерелами іонізуючих випромінювань , нормами радіаційної безпеки , та інших чинних нормативних документів , що регламентують поводження з радіоактивними речовинами.

5.7 . Відповідно до вимог ст. 24 Закону РРФСР « Про санітарно – епідеміологічне благополуччя » не допускається :

• пересипати відходи класів Б і В з однієї ємності в іншу;

• встановлювати одноразові і багаторазові ємності близько електронагрівальних приладів;

• утрамбовувати будь-які відходи руками ;

• здійснювати збір відходів без рукавичок.

6 . Загальний порядок проведення дезінфекції відходів та багаторазового інвентарю .

Відходи класу Б і В повинні бути піддані обов’язковій дезінфекції перед збором в одноразову упаковку безпосередньо на місцях первинного збору відходів методом занурення у дезінфікуючий розчин , підготовлений в спеціально виділеній для цієї мети ємності.

Дезінфекція відходів класів Б і В проводиться у відповідності з діючими нормативними документами.

Для дезінфекції слід використовувати зареєстровані Міністерством охорони здоров’я Росії і рекомендовані до застосування в медичних установах дезінфікуючі засоби в концентраціях і часу експозиції , зазначених у відповідних рекомендаціях щодо їх використання. Дезінфекція проводиться в межах медичного підрозділу , де утворюються відходи даного класу.

6.2 . Дезінфекція багаторазових збірників для відходів класу А проводиться щодня силами лікувально -профілактичного закладу.

6.3 . Дезінфекцію ( між) корпусних контейнерів для збору відходів класів Б і В , кузовів автомашин виробляє автотранспортна організація , яка вивозить відходи один раз на тиждень в місцях розвантаження .

У разі аварійних ситуацій , при виявленні відкритого знаходження відходів всередині ( між) корпусних контейнерів або автотранспорту дезінфекція проводиться негайно . Для цих цілей в ЛПУ необхідно організувати місця для миття та дезінфекції ( між) корпусних контейнерів і автотранспорту.

Місце для дезінфекції асфальтується і повинно мати єдиний стік. Стічні води після дезінфекції збираються і зливаються в каналізаційну мережу медичного закладу .

7 . Загальні вимоги до інвентарю для організації системи збору та видалення відходів та місць установки ( між) корпусних контейнерів.

7.1 . Одноразові пакети , які використовуються для збору відходів класів Б і В , повинні забезпечувати герметизацію і можливість безпечного збирання в них до 15 кг відходів. Пакети для збору відходів класу Б повинні мати жовте забарвлення, класу В – червону , класу А – білу.

7.2 . Конструкція одноразових баків для збору відходів класу Б і В , повинна забезпечувати з герметизацію в процесі збору та неможливість їх розкриття при транспортуванні відходів поза межами медичного відділення ( лабораторії ) .

7.3 . Конструкція візків (стійок) для транспортування одноразових пакетів повинна забезпечувати можливість їх закріплення і бути зручною в експлуатації.

7.4 . Конструкція багаторазових баків для збору відходів класу А і установки одноразових пакетів повинна передбачати кришку , а також колеса і ручки для зручного транспортування .

7.5 . Збір відходів різних класів проводиться в різні контейнери. Контейнери для збору відходів різних класів повинні володіти легко помітними відмінностями. Контейнери для збору відходів одного класу повинні бути повністю ідентичні.

7.6 . Використовувані ( між) корпусні контейнери повинні володіти герметичними щільно закриваються кришками. Конструкція контейнерів повинна бути повністю герметична і вологонепроникна , не допускати можливість контакту сторонніх осіб з їх вмістом , недоступна тваринам.

7.7 . Контейнери для збору відходів класів А , Б , Г розташовуються на відкритому майданчику або в ізольованому приміщенні медичного корпусу . До приміщень корпусу , в яких розташовуються контейнери з відходами , пред’являються спеціальні вимоги (додаток 1).

7.8 . Контейнери для збору відходів класу В розташовуються тільки в ізольованому приміщенні медичного корпусу . До приміщень корпусу , в яких розташовуються контейнери з відходами класу В , пред’являються спеціальні вимоги (див. додаток 1).

Зберігання контейнерів з відходами класу В спільно з контейнерами відходів класів А , Б , Г неприпустимо.

7.9 . Відкритий майданчик для встановлення контейнерів повинна мати асфальтовану поверхню і бути зручною для під’їзду автотранспорту та проведення вантажно – розвантажувальних робіт . Відкриті майданчики для встановлення контейнерів розташовуються не менше ніж в 25 м від лікувальних корпусів і не менше 100 м від харчоблоків .

7.10 . Допускається розташування контейнерів для збору відходів різних класів на одній відкритому майданчику. На відкритому майданчику допускається розташування не більше 5 контейнерів.

8 . Умови тимчасового зберігання та видалення відходів.

8.1 . Відкрите зберігання і контакт персоналу з відходами класів Б , В, Г поза приміщеннями медичного підрозділу не допускається.

8.2 . Зберігання і транспортування відходів територією лікувально -профілактичного закладу класів А , Б , В допускається тільки в герметичних багаторазових контейнерах. Змішання потоку видалення відходів класу В з іншими потоками не допускається. Відходи класів А , Б , В допускається зберігати не більше 1 доби в природних умовах , більше доби при температурі не вище 5 ° С. Харчові відходи всіх класів необхідно зберігати в холодильниках при температурі не вище 5 ° С. Вивіз відходів класів А , Б , В повинен здійснюватися щоденно за відсутності на території лікувального закладу установки по знешкодженню відходів.

8.3 . При транспортуванні відходів класу А дозволяється застосування автотранспорту , використовуваного для перевезення твердих побутових відходів.

8.4 . Основною системою збору та видалення медичних відходів є система « змінюваних » збірок. При системі « змінюваних » збірок відходи в контейнерах вивозять в закритих кузовах автомашин , спеціально призначених для цих цілей , а на місце видалених контейнерів встановлюють порожні збірники.

8.5 . Транспортування відходів класів А , Б, В поза території ЛПУ допускається тільки в закритих кузовах спеціально застосовуваних для цих цілей автомашин. Використання автомашин , призначених для перевезення відходів класів Б і В , для інших цілей не допускається.

8.6 . Зберігання відходів класу Г проводиться у спеціально відведених для цієї мети допоміжних приміщеннях.

8.7 . Відходи класу А можуть бути поховані на звичайних полігонах з поховання твердих побутових відходів. Відходи класів Б , В необхідно знищувати на спеціальних установках по знешкодженню відходів ЛПУ термічними методами.

8.8 . Знешкодження відходів класу Б і В може здійснюватися децентралізованим або централізованим способами.

Розміщення установок з термічного знешкодження відходів ЛПУ на території лікувального закладу ( децентралізований спосіб) розглядається та узгоджується з територіальними центрами держсанепіднагляду .

При централізованому способі відходи ЛПУ знешкоджуються в печах великих сміттєспалювальних заводів. Місце розташування, умови експлуатації , рівні впливу на навколишнє середовище даних заводів регламентуються відповідними нормативними документами.

За відсутності установки по знешкодженню епідеміологічно безпечні патологоанатомічні й органічні операційні відходи (органи , тканини і т.п.) захоронюються на кладовищах у спеціально відведених могилах. Інші відходи класу Б ( матеріали та інструменти , виділення пацієнтів , відходи з мікробіологічних лабораторій і віваріїв ) після дезінфекції , проведеної відповідно до розділу 7 цього документа , вивозять на полігони твердих побутових відходів.

8.9 . Транспортування , знешкодження та захоронення відходів класу Г здійснюється відповідно до гігієнічних вимог , що пред’являються до порядку накопичення , транспортування, знешкодження та захоронення токсичних промислових відходів.

9 . Реалізація схеми збору і видалення відходів.

Деталізація і реалізація планів по збору та видалення відходів розробляється окремо для кожного ЛПЗ . При складанні плану збору і видалення відходів виконуються наступні заходи .

9.1 . Виробляється якісний і кількісний аналіз відходів, що утворюються . Обчислюються величини накопичення відходів за класами .

9.2 . Визначається кількість необхідної упаковки в місцях первинного збору для кожного класу відходів.

Одноразова упаковка , контейнери для ( між) внутрішньокорпусні збору , приміщення для внутрішньокорпусні збору відходів повинні задовольняти вимогам , викладеним у відповідних пунктах даних санітарних правил.

9.3 . Розробляється система збору та видалення відходів з урахуванням вимог, що пред’являються до роздільного збирання та видалення відходів різних класів , при цьому враховується:

• відходи класів Б і В повинні бути піддані обов’язковому термічному знешкодженню ;
ДОДАТОК 1

Вимоги до внутрішньокорпусні приміщень для тимчасового зберігання медичних відходів

1 . Підлога приміщень викладається керамічною плиткою.

2 . Стіни приміщень викладаються глазурованою плиткою по всій висоті.

3 . Покриття стелі вологостійкою фарбою .

4 . Віконні блоки по серії 1.236-6 вип.1 .

5 . Внутрішні дверні блоки по серії 1.136-10 .

6 . Приміщення має бути обладнане:

• умивальником ;

• поливальним краном ;

• стоком води ;

• бактерицидну опромінювачем ;

• вентиляцією.

ДОДАТОК 2

Адреси спеціалізованих центрів з організації навчання поводженню з відходами лікувально -профілактичних установ

1 . НДІ екології людини та гігієни навколишнього середовища ім . О.М. Сисіна , 119833 , м. Москва , Погодинская вул. 10 , тел. 246-58-05 , факс 245-03-14 .

2 . Центр санітарної очистки міста – м. Москва , 2 -й Нагатинский проїзд , стор 6Б , тел. 111-13-73 .

3 . Медична академія післядипломної освіти , Кафедра медичної екології , 195015 , м. Санкт -Петербург , вул. Салтикова -Щедріна , д. 41 , тел. 275 – 19-21 , факс 275-19-22 .

ДОДАТОК 3

* Адреси спеціалізованих центрів в м. Москві та м. Санкт -Петербурзі наведені в додатку 2.

** Згідно СанПіН 1.2.036-95 «Порядок обліку , зберігання , передачі та транспортування мікроорганізмів 1-4 -ї груп патогенності .

*** Загальний порядок проведення дезінфекції визначається в розділі 7 «Вимоги до дезінфекції відходів та багаторазового інструментарію ».
• відходи класу А можуть бути піддані термічному знешкодженню або вивезені на спеціальні полігони.

9.4 . Керівником ЛПУ за погодженням з ЦГСЕН затверджується інструкція , що встановлює правила поводження з відходами та персональну відповідальність співробітників , схема видалення відходів , що включає відомості про якісний і кількісний склад відходів , місцях для установки і види ємностей для збору відходів , місцях проміжного зберігання відходів , про витрати на збір , транспортування та видалення відходів.

Comments are closed.